如何阅读质粒图谱

第一步，查看质粒图谱上的箭头标识：

多数质粒图谱上都会有箭头标识：一种是转录方向，转录方向主要是由启动子开始的一个大箭头，是启动子启动序列的顺序。另一种是复制起始位点的方向，复制起始位点就是该质粒在大肠杆菌等细菌或真菌中DNA复制的一个方向。了解转录的方向，这样就方便设计插入片段的位置和方向性。 质粒图谱上有的箭头顺时针有的箭头逆时针，是指两条DNA链，即质粒是环状双链DNA，它的启动子等在其中一条链上，而它的抗性基因在另一条链上 .根据表达宿主不同，构建时所选择的载体也会不同。

第二步，看质粒图谱上的标签：

Ori：DNA 复制起始位点，原核生物DNA分子中只有一个复制起始点。而真核生物DNA分子有多个复制起始位点。

P：启动子，这个质粒上用的是一个CMV启动子，来启动后面的表达蛋白。常见的启动子有：CMV、EF1，H1、U6等。

R：抗生素抗性基因，最常见的是：Amp（氨苄青霉素）、Kan（卡那霉素）、Tet（四环素，tet on/tet of）、Cmr（氯霉素）、SM（链霉素）、Hyg（潮霉素）。

pA：即转录终止位点poly A，可以起到稳定mRNA作用。

报告基因：常见的有copGFP（绿色荧光蛋白），Puro（嘌呤霉素），Lacz（乳糖操纵子）等等。和抗性基因不同，这样的报告基因，并不是为了在大肠杆菌扩增质粒的过程中起作用的。而是在质粒转入表达体系后起到作用的，基本上就是为了显示过表达或是敲减的基因是否正常运作。有的报告基因会融合在蛋白中表达，有的会另外用一个独立的启动子进行表达（比如shRNA的质粒中）。

其他：包括一些调控元件和目的蛋白。

第三步，看质粒图谱的多克隆位点（MCS）：

MCS（Multiple Cloning Site），一般图中会把多克隆位点上的酶切位点都标记出来。上面的酶切位点顺序，一般都是按照5`-3`的顺序排列下来的，需要注意的是这样几点。

第一，有些酶切位点边标注了*的一般是指并不仅仅存在一个位点，也就不能用来作为构建质粒的酶切位点。

第二，有的酶切位点，在序列中只有一个，但也标注了一个*或者（dam），这说明可能这个酶切位点会有CpG岛的甲基化修饰，一般也是不能用的。但是非要用这个酶切位点的话，就需要用非甲基化的感受态细胞，如JM109或者JM110。

第四步：外源DNA插入片段大小

质粒一般只能容纳小于10Kb的外源DNA片段。一般来说，外源DNA片段越长，越难插入，越不稳定，转化效率越低。

第五步：是否含有表达系统元件

即启动子－核糖体结合位点－克隆位点－转录终止信号。这是用来区别克隆载体与表达载体。克隆载体中加入一些与表达调控有关的元件即成为表达载体。选用那种载体，还是要以实验目的为准绳。

启动子－核糖体结合位点－克隆位点－转录终止信号

启动子－促进 DNA 转录的 DNA 序列，这个 DNA 区域常在基因或操纵子编码序列的上游，是 DNA 分子上可以与 RNApol 特异性结合并使之开始转录的部位，但启动子本身不被转录。

增强子/沉默子－为真核基因组（包括真核病毒基因组）中的一种具有增强邻近基因转录过程的调控顺序。其作用与增强子所在的位置或方向无关。即在所调控基因上游或下游均可发挥作用。

核糖体结合位点/起始密码/SD 序列（Rbs/AGU/SDs）：mRNA 有核糖体的两个结合位点，对于原核而言是 AUG（起始密码）和 SD 序列。

转录终止序列（终止子）/翻译终止密码子：结构基因的最后一个外显子中有一个 AATAAA的保守序列，此位点 down－stream 有一段 GT 或 T 富丰区，这2部分共同构成 poly（A）加尾信号。结构基因的最后一个外显子中有一个 AATAAA 的保守序列，此位点 down－stream 有一段GT 或 T 富丰区，这2部分共同构成 poly（A）加尾信号。

质粒是基因工程中常用的载体,也是生物学实验的基本要素,正确的阅读质粒图谱是实验的第一步,但是每当拿到一个质粒图谱,第一反应就是一脸懵,这是什么玩意?这些ori、RBS、tet是什么鬼?这些箭头代表什么,转录的方向吗?为什么都不相同,不会“撞车”么?这玩意究竟怎么看啊?为了解决这一难题,准确无误的阅读质粒图谱显得很关键,对你的实验会起到事半功倍的效果。

但是如何阅读质粒图谱,下面就开始进行详细介绍:

一、具体步骤:

第一步:先了解质粒的基本组成元素,Ori复制起始点、抗性基因有哪些、多克隆位点在哪里,有哪些酶切位点?有哪些荧光标记或蛋白标签序列?

第二步:看质粒是否是表达载体,如果是,那就必定有这些原件:启动子-核糖体结合位点-克隆位点-转录终止信号。

第三步:弄清楚方向。为什么质粒图谱上有的箭头顺时针有的箭头逆时针?那其实是代表两条DNA链,即质粒是环状双链DNA,它的启动子等在其中一条链上,而它的某些基因在另一条链上。当然,最重要的是要弄清楚目的基因插入那一段(从T7启动子到终止子那一段)的方向,即下图黄色圈圈所示的箭头方向,其它的大可以忽略。

二、看Ori(复制起始原点)的位置:

对于一个质粒,首先要确定它的性质和类型,因为不一样的类型它的特点也是不一样的。我们首先可以根据Ori来了解质粒的类型,看它到底是原核、真核、穿梭质粒、慢病毒或者是腺病毒的载体。

那怎么判断呢,首先知道Ori是什么。其实就是它控制复制起始的位点,是在基因组上复制起始的一段序列。

Ori序列特点

1.复制原点处的A和T特别多,相对氢键少,不稳定,DNA容易解旋,因此就容易和引物结合,成为转录的起点或复制的起点。

2.Ori的箭头指复制方向,而质粒中其他元件的箭头一般指转录方向(正向)。

3.一般真核质粒会有两个Ori,属于穿梭质粒的一种,意思是一般这个质粒既有原核生物的Ori(方便在如大肠杆菌的细菌中复制、扩增),还有真核生物的Ori(方便其在真核细胞中表达)。下周四我们专门分享一下蛋白表达系统。

4.真核生物DNA分子通常有多个复制起始位点,而原核生物通常只有一个(这句话和质粒的Ori不相关,但是必须介绍,这涉及到如果你哪天可以自己合成质粒或者在构建质粒时,可以根据类型不同而你在Ori的选择方面会更灵活)。

5.ColE1(大肠杆菌素),这个质粒的真身就是从大肠杆菌中发现的天然的质粒,是个原核质粒,所以它的ori只需要1个。而慢病毒、逆转录病毒属于RNA病毒,只有1个复制起点。腺病毒也只有1个复制起点。

三、逆转录病毒质粒的示意例图 

1、筛选标记:

筛选标记也就是这个质粒的抗性,抗性又决定应该使用什么抗生素来培养、筛选。原核和真核的筛选又是不一样的。

原核筛选标记常用的是氨苄青霉素(Ampr)、氯霉素(Camr)、卡拉霉素(Kanr)、四环素(Tetr)等。

真核筛选标记用的是嘌呤霉素(Puro),G418,潮霉素β(Hygr)

原核和真核都可以的筛选标记,Zeocin、Blasticidin(通过干扰核糖体中肽键的形成来特异性抑制原核和真核生物的蛋白质合成),我们做衣原体制备的特殊质粒很多时候选择的是Blasticidin。

2、看多克隆位点(MCS):

所谓的MCS,也就是你可以接外源基因进入质粒的地方。在这里有多个限制性内切酶的单一切点,在这里就决定能不能放目的基因(也就是目的基因中是否包含此酶切位点)以及如何放置目的基因(就是你选择什么限制性内切酶来克隆)。

3、Gateway cloning

在Invitrogen的有一系列质粒系统不需要MCS,这个系统叫Gateway。

Gateway:

这个系统的质粒就长成上面那个样子。在质粒中有两个Att位点,这两个位点主要用于同源重组。在重新构建质粒的过程中,就是插入的目的基因通过同源重组取代Cm和ccdB两个基因。

这个系统的特性是什么样子的呢,首先CmR,这个是一个氯霉素抗性;其次ccdB(Control of cell death)基因是一个可以控制死亡的基因,原理就是如果质粒没有重组成功,ccdB蛋白会破坏细菌的DNA解旋酶,从而染色体降解死亡。如果质粒重组成功,则 ccdB基因表达受阻,所以细菌就可以生长。

4、看功能元件:

质粒的启动子,看这个质粒是什么类型的启动子。启动子是能够使基因进行转录的一段大小约为20bp的DNA序列。

(1)启动子特点:

1.可以被RNA polymerase识别,并启动转录。

2.启动子通常位于目的基因上游100-1000bp位置处,也有到2000bp的地方。

3.启动子是质粒非常重要的一个组成元件,它决定着目的基因可以在何种细胞中进行表达,也决定着这个基因转录的蛋白表达量。

(2)启动子与RNA polymerase的关系

1.DNA被RNA polymerase催化转录成RNA。

2.在原核生物如细菌中,只存在一种RNA polymerase。

3.真核生物中则有3种RNA polymerase,分为Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ三种。

4.这3种酶分别催化不同种类型RNA的转录,意味着3种酶识别不同的启动子。所以质粒上的启动子类型必须与目标RNA相对应。比如只是基因表达,那我们需要的是mRNA,那么质粒上就要有RNA  polymerase Ⅱ的启动子。

5.启动子需要与宿主细胞类型相对应。

6.细菌启动子与真核启动子是不可互用。

5、启动子类型:

启动有不同的类型,有些启动子可以一直工作(组成型启动子),而有些启动子是需要进行调控的(诱导性启动子)。

(1)组成型启动子

这类启动子用于组成型蛋白质的持续表达,不受时期、部分、环境的影响,这类启动子一般比较弱(因为较强后,它消耗的能量很多,会造成宿主的负担大,从而死亡)。比如在我们衣原体中最开始一类以脑膜炎球菌为启动子的质粒(nmP),下游的衣原体基因表达就特别低。

(2)诱导型启动子

这类启动子通常比较强,这类启动子受到外界条件诱导后开始工作。通常都是抗生素启动子,如Tet,Puo这种。比如衣原体的另一个质粒,在上述那个质粒上我们通过改造加了Tet的一个诱导型的启动子,可以外源性加不同浓度的Tet诱导下游的基因表达。

启动子的强弱主要是其与RNA polymerase相互作用的强弱及多少有关系。而强启动子通常直接或间接影响着RNA polymerase的产量。

(3)引物结合位点?

这个引物结合位点也就是一小段DNA片段,可以用来进行质粒的PCR扩增或者测序。比如T7载体。

6、是否带荧光?

我们有时候在做需要track一个蛋白在细胞中的location时,会在这个蛋白后面接一个融合荧光蛋白或其他。相对应的质粒上就会有一个荧光蛋白。

(1)外源DNA片段插入大小?

质粒一般只能容纳小于10Kb的外源DNA片段。通常,外源DNA片段越长,越难插入,越不稳定,转化效率越低。也就是说越难做克隆。

(2)是否含有表达系统元件?

也就是是否包含表达的那一套即启动子、增强子/沉默子、核糖体结合位点、克隆位点和转录终止信号。这个是用来区别克隆载体与表达载体的。

(3)增强子/沉默子

这个是针对真核基因组(包括真核病毒基因组)中的一种具有增强或减弱邻近基因转录过程的调控序列。其作用与位置或者方向均无关,也就是不管是位于所调控基因上游或下游均可发挥作用。

(4)核糖体结合位点/起始密码/SD序列(Rbs/AGU/SDs)

mRNA有核糖体才可以翻译。转录终止顺序(终止子)/翻译终止密码子

真核生物基因的最后一个外显子中有一个“AATAAA”的保守序列。而在此位点下游会有一段富含GT或T的序列,这两个部分共同构成我们熟知的poly(A)加尾信号。也就是我们的终止子。

基因载体是基因工程的核心，也是基因治疗中强有力的生物工具，我们先来认识和阅读载体图谱吧。

一、载体分类及载体组成元件

载体分类

1、按属性分类：病毒载体和非病毒载体

病毒载体是一种常见的分子生物学工具，可将遗传物质带入细胞，原理是利用病毒具有传送其基因组进入目的细胞，进行感染的分子机制。可发生于完整活体或是细胞培养中。可应用于基础研究、基因疗法或疫苗。用于基因治疗和疫苗的病毒载体应具备以下基本条件：

（1）携带外源基因并能包装成病毒颗粒；

（2）介导外源基因的转移和表达；

（3）对人体不致病；

（4）在环境中不会引起增殖和传播。

   非病毒载体一般是指质粒DNA。

2、按进入受体细胞的类型分类：原核载体、真核载体、穿梭载体（含原核和真核2个复制子，能在原核和真核细胞中复制，并可以在真核细胞中有效表达）。

3、按功能分类：克隆载体、表达载体

克隆载体：具有克隆载体的基本元件（Ori，Ampr，MCS等），可以携带DNA片段或外源基因进入受体细胞并克隆和大量扩增DNA片段（外源基因）的载体。

   表达载体：克隆载体中加入一些与表达调控（具有转录/翻译所必需的DNA顺序）有关的元件即成为表达载体。

载体组成元件

1、复制起始位点Ori：即控制复制起始的位点。Ori的箭头指复制方向，其他元件标注的箭头多指转录方向（正向）。

2、抗生素抗性基因：可以便于加以检测，如Amp+ ，Kan+

（1）Ampr：水解β-内酰胺环，解除氨苄的毒性。

（2）tetr ：可以阻止四环素进入细胞。

（3）camr：生成氯霉素羟乙酰基衍生物，使之失去毒性。

（4）neor（kanr）：氨基糖苷磷酸转移酶，使G418（卡那霉素衍生物）失活。

（5）hygr：使潮霉素β失活。

3、多克隆位点：MCS克隆携带外源基因片段，它具有多个限制酶的单一切点，便于外源基因的插入。如果在这些位点外有外源基因的插入，会导致某种标志基因的失活，便于筛选。决定能不能放目的基因以及如何放置目的基因。还要再看外源DNA插入片段大小。质粒一般只能容纳小于10kb的外源DNA片段。一般来说，外源DNA片段越长，越难插入，越不稳定，转化效率越低。

4、P/E：启动子/增强子

5、Terms：终止信号

6、加poly（A）信号：可以起到稳定mRNA作用

示例阅读载体：

pENTER载体

1）human ORF + pENTER载体

2） CMV启动子，T7启动子

3） ORF的C端融合了Flag和His tag

4)  多克隆位点，常用AsisI 和 MluI(人源基因上不常见的)

4） SV40 poly（A）加尾信号

5） SV40启动子启动的puro标记

6） 2个腺病毒ITR序列和2个与腺病毒Ad5同源的序列，可用于将ORF序列同源重组到腺病毒载体，直接用于腺病毒的生产。

慢病毒载体

1）EF1a启动目的基因（可添加小标签FLAG或HIS等小标签）

2）CMV启动GFP，非融合抗性筛选标记Puro（便于做细胞株的稳筛）

3）WPRE（来自土拨鼠肝炎病毒的转录后调节元件），放置在目的基因的上游，能加强转基因的表达

4)  cPPT（来自HIV-1整合酶基因），增加慢病毒在宿主基因组的拷贝数，提高病毒滴度

5）第三代慢病毒载体，载体中还包含HIV-1基因组中的顺式调节元件(ψ 包装 信号和LTR 长末端重复序列，其中3’LTR增强子功能缺失，5’LTR中U3区替代为CMV，更加安全的病毒载体)

腺相关病毒载体

AAV表达载体包括了中两个ITR + CMV（可替换其他组织特异性启动子，见改造载体部分）+ globin intron 内含子序列 + 目的基因 + poly A序列

二、选择和准备载体

选择载体主要依据构建的目的，同时还要考虑载体中应有合适的限制酶切位点等。如果构建的目的是要表达一个特定的基因，则要选择合适的表达载体。选用哪种载体，还是要结合目的基因及载体特点以实验目的为准绳。

载体选择主要考虑下述3点：

1、构建DNA重组体的目的，克隆扩增/表达表达，选择合适的克隆载体/表达载体。

2、载体的类型：

（1）克隆载体的克隆能力—据克隆片段大小（大选大，小选小）。尤其对于病毒载体来说，载体包装容量的大小是评估能否成功包装病毒的首要因素。

①腺病毒可以插入长约8kb的外源基因。目前，我们包装过长度为7.5kb外源基因的腺病毒。

②慢病毒的包装容量约为6kb（包含载体带有的其他抗性基因或报告基因），但是2kb以上的外源基因包装慢病毒难度就增加了，增大1kb会下降1个单位数量级的滴度，故2kb以上的基因包装慢病毒需要进行评估。此外，毒性蛋白、凋亡蛋白和膜蛋白（作为受体、转运蛋白行使功能）等由于其本身的功能，包装可能会有一定难度。

③AAV的总包装容量是4.7 kb（包含载体中两个ITR约0.3kb +具体启动子 + 内含子约0.6kb + 具体荧光标签 + polyA约0.2kb），所以插入目的基因一般约2kb 左右。由于AAV包装容量有限，目的基因大于2kb，可考虑去除内含子，因为内含子只是有助于插入的目的基因稳定表达。

（2）确定表达蛋白的目的，然后再来选择优势的表达质粒。一般分为原核表达和真核表达质粒，前者主要用于体外纯化蛋白，如带His-tag的PET系列，带GST-Tag的PGEX系列，选用不同的表达载体，就得建立相应的纯化系统，包括缓冲液的配置、珠子/柱子的选择等等，还得考虑目的蛋白的可溶性，一般大tag的融合蛋白可溶性要好一些，如GST的。这种原核纯化的蛋白一般用来制备单一的、需要量大的蛋白。真核表达载体一般是细胞、体内表达等需要时所用，只需要将它放到细胞或体内细胞即可，唯一考虑的是它的启动子的选择，常用都是cmv启动子的，表达效率较高，也有多种启动子经过改造的表达载体，一般用来表达需要调控表达时间及表达量的蛋白。

3、载体MCS中的酶切位点数与组成方向因载体不同而异，适应目的基因与载体易于连接，不产生阅读框架错位。

①选分子量小的质粒，即小载体（1-1.5kb）→不易损坏，在细菌里面拷贝数也多（也有大载体）；

②一般使用松弛型质粒在细菌里扩增不受约束，一般10个以上的拷贝，而严谨型质粒<10个；

③必需具备一个以上的酶切位点，有选择的余地；

④必需有易检测的标记，多是抗生素的抗性基因。

选择载体还需注意：

无标签载体，起始/终止密码子都要添加！

标签在N端的载体，终止密码子要添加！

标签在C端的载体，起始密码子要添加！

（详细解读如下）

①对于无起始密码子和终止密码子的基因，插入无标签的载体要加入起始密码子和终止密码子。

②载体N端有标签，上游引物要对读码框；下游引物要加终止密码子(为了保证基因的表达,少翻译载体序列) 。

链接：对读码框是为了防止移码，是不是移码要看载体图谱，看酶切位点。从ATG开始，要保证三个碱基编码的氨基酸不能影响插入目的基因的正常编码，若影响了插入目的基因的正常编码就要在设计引物的时候在酶切位点前或者后插入一个或者两个碱基，总之是不能影响插入目的基因的正常编码蛋白。有的酶切位点含有起始密码子，如果标签在C端像Nco I就有一个ATG，这时候需要加碱基在酶切位点后面。

③载体C端有标签，上游引物要加起始密码子，且考虑是否加Kozak序列（真核表达系统）；下游引物要对读码框，并且要去掉基因本身的终止密码子（保证C端标签表达）。

链接：Kozak序列是位于真核生物mRNA 5’端帽子结构后面的一段核酸序列，通常是GCCGCCRCC（常见的序列是GCCACC），位于起始密码子（ATG）之前。它可以与翻译起始因子结合而介导含有5’帽子结构的mRNA翻译起始。在真核生物中，该序列相对比较保守。对应于原核生物的SD序列（原核基因在mRNA5’端起始密码子AUG上游一段对mRNA的翻译起作用的序列）。

添加Kozak序列的好处：核糖体需要Kozak序列进行稳定结合有助于提高真核基因的转录和翻译的效率。

三、改造载体

1、改造启动子：一般在过表达载体中CMV属于广谱型的强启动子，具体可根据实验需求，选用不同启动子，尤其是对于AAV载体构建时选用组织特异性启动子。

启动子名称启动子大小组织特异性

ALB2.4kb肝脏特异性

CAG944bp广泛表达的强启动子

CamKIIa1.2kb大脑皮层和海马神经元特异性启动子

CMV0.6kb广泛表达的强启动子

EF1A1.2kb广泛表达的启动子(尤其在体内稳定表达)

GFAP1.0kb星形胶质细胞特异性启动子

aMHC0.4kb心肌α肌球蛋白重链启动子

cTNT702bp心肌特异性

Synapsin471bp成熟神经元特异性启动子

Rpe65700bp视网膜特异性

3Xenhancer McK728bp小鼠中肌肉特异性启动子

NSE1.3kb神经元特异性烯醇化酶启动子

2、实验目的的需要：

①构建过表达or干扰载体

根据实验用途选择载体，如过表达载体通常选用CMV启动子，CMV因其集中了细胞转录因子结合位点而具有异常高的活性，是公认的真核表达中的增强子，一般插入某个基因的CDS区到CMV启动子下游，CMV负责启动该基因的表达，从而达到调高该基因表达的作用；而U6和H1更多的是用于shRNA的启动来达到敲低一个基因的作用，U6和H1启动子都是RNA聚合酶Ⅲ依赖的启动子，其特点是启动子自身元素均位于转录区的上游，适合于表达约21个核苷酸和约50个核苷酸茎环结构（stem loop），RNA聚合酶Ⅲ有明确的起始和终止序列，当RNA聚合酶Ⅲ到连续4个或5个T时，它指导的转录就会停止。

我们公司的shRNA病毒载体（包括腺病毒载体、慢病毒载体和腺相关病毒载体）是由U6或H1 启动shRNA 实现，并连接了报告基因，可以实时监测载体的转染效率。构建干扰载体针对目的基因（目的基因需要大于0.7kb，若小于0.7kb需要评估来确保能设计出8条shRNA序列），设计并提供4个针对靶基因的shRNA产品，确保4个shRNA中的1个产品在细胞感染效率达80%以上的前提下，在mRNA水平至少有70%的沉默效果；也可以按照客户的要求来设计，由客户确定shRNA 序列的长度，对于每条选定的靶序列，设计正义链和反义链，以 loop茎环结构相连，合成shRNA。

②是否携带GFP等荧光标签

携带荧光标签基本目的是为了观察感染目的细胞的效率；携带该标签的好处之一是不用破碎组织细胞和不加任何底物，直接通过荧光显微镜就能在活细胞中发出绿色荧光，实时显示目的基因的表达及定位情况，而且荧光性质稳定。但是，由于GFP标签比较大（约720bp），这种大标签在位置上对目的基因造成了空间位阻作用，对蛋白的空间结构产生一定影响，从而不利于目的基因蛋白本身的活性及正常功能的发挥。此外，还需要结合蛋白本身的特性，比如该蛋白为具有切割活性的蛋白，即使融合了GFP，标签很有可能会被破坏，终究会影响GFP的荧光及基本功能。一般不建议融合这么大的标签，实验需要带荧光标签，建议构建载体时通过P2A非融合。

③是否融合6×His、HA、Myc、FLAG等小标签

为了做免疫共沉淀实验或者WB检测蛋白表达,需要加融合小标签。多数情况下,由于多肽标签相对较小，对目的蛋白质结构影响小。但是在蛋白合成肽链的过程中，如果影响了蛋白的折叠，也会造成目的蛋白活性的下降甚至功能的丧失。

④是否含有表达系统元件，即启动子－核糖体结合位点－克隆位点－转录终止信号。

链接：启动子：促进DNA转录的DNA序列，这个DNA区域常在基因或操纵子编码区的上游，是DNA分子上可以与RNA聚合酶特异性结合并使之开始转录的部位，但启动子本身不被转录。

增强子：为真核基因组（包括真核病毒基因组）中的一种具有增强邻近基因转录过程的调控顺序，其作用与其所在的位置或方向无关。即在所调控基因上游或下游均可发挥作用。

沉默子：负增强子，负调控序列。

核糖体结合位点/SD序列：mRNA的起始AUG上游约8~13核苷酸处，存在一段由4~9个核苷酸组成的共有序列，可被16SrRNA通过碱基互补精确识别的序列被称为核糖体结合位点/SD序列是对原核生物而言，在mRNA 5’ 端起始密码子AUG上游一段对mRNA的翻译

起作用的序列。

转录终止顺序（终止子）/翻译终止密码子：结构基因的最后一个外显子中有一个AATAAA的保守序列，此位点下游有一段GT或T富丰区，这2部分共同构成poly（A）加尾信号。

3、载体中P2A和IRES的选择：

IRES和P2A的比较

IRESP2A

定义IRES内部核糖体进入位点序列：是一段约500bp的核酸序列，这类RNA序列能折叠成类似于起始tRNA的结构，从而介导核糖体与RNA结合，能独立的起始蛋白翻译。P2A肽(2A peptide)是一种可”自我剪切”的短小肽链，最初在FMDV中发现，约22个氨基酸，2A肽可在蛋白翻译时通过核糖体跳跃从自身最后2个氨基酸C末端断裂。

优点IRES被放置于两个ORF之间的时候，可以同时表达这两个ORF。由于两个ORF分别有自己的起始密码子和终止密码子，所以会翻译两个独立的、没有经过修饰的蛋白。两个基因（ORF）通过2A多肽链连接成为一个ORF，mRNA翻译成一个融合蛋白，但这两个融合蛋白会被识别2A的蛋白酶切成两个蛋白。这两个蛋白的摩尔比理论上是1:1。

缺点IRES的存在有时候会影响mRNA的结构，同时由于IRES和mRNA的5’CAP对核糖体/或翻译起始复合物的结合力不同，IRES后面的ORF翻译蛋白的水平有可能与IRES前面的ORF蛋白水平不一致。有的时候前面的ORF表达很好，但后面的ORF表达水平不高；有的时候后面的ORF和/或IRES会影响前面ORF的表达，甚至前面的ORF根本不表达。2A是一个大约22个氨基酸的多肽。蛋白酶切割会发生在2A多肽C端的甘氨酸（G）和脯氨酸（P）之间。所以，前一个蛋白的尾巴上会留下一个20多个氨基酸的多肽。后面一个蛋白的N端会留下一个多余的脯氨酸。尤其是第一个蛋白，如果是一个小分子（比如分泌型的细胞因子），可能其功能会受到这20多个氨基酸的影响。

建议IRES序列后基因的表达效率显著低于IRES序列前基因的表达，所以与IRES相比，2A肽具有以下优点：（1）2A序列短，能够有效地实现连接基因之间的共表达；（2）位于2A下游的基因同样可以获得很高的表达水平。

四、影响载体选择的因素：

原核表达 or 真核表达

细胞实验 （过表达 or 干扰、瞬时表达 or稳转株、基因大小、荧光、药筛 ）

动物实验 （过表达 or 干扰、注射部位、基因大小、观察周期 ）

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